NEB 10-beta 感受态细胞
NEB 10-beta 感受态细胞,NEB 10-beta competent cell
货号 品名 规格 单位
北京华越洋GX0191-100 NEB 10-beta 感受态细胞 100ul*20 包 询价
北京华越洋GX0191-100s NEB 10-beta 感受态细胞 100ul*10 包
-70℃保存,避免反复冻融。不适合在液氮中保存。
产品介绍: 本公司生产的NEB 10-beta感受态细胞是采用大肠杆菌NEB 10-beta菌株经特殊工艺处理得到的感受态细 胞,可用于DNA的化学转化。使用pUC19质粒检测,转化效率可达109-1010cfu/μg,-70 ℃保存6个月转化效率.
NEB 10-beta 感受态细胞产品特点
1.大肠杆菌K12菌株背景,DH10B菌株的衍生菌株,核基因中具有链霉素抗性基因(StrR)。
2.可转化大质粒和BACs。
3.DNA重组缺陷(recA1)和内切酶 I缺陷(endA1)的特点有利于DNA克隆的稳定和高纯度质粒DNA的提取。
4.对T1噬菌体有抵抗能力(fhuA2)。
5.无需添加IPTG,只加X-gal即可检测beta半乳糖苷酶活性,用于蓝白斑筛选。
NEB 10-beta 感受态细胞基因型:
araD139∆(ara-leu)7697fhuAlacX74galK(f80∆(lacZ)M15)mcrAgalUrecA1endA1nupGrpsL(StrR)∆(mrr-hsdRMSmcrBC)
NEB 10-beta 感受态细胞操作步骤(以下操作均按无菌条件的标准进行):
提示
感受态细胞应保存在-70℃,不可多次冻融和放置时间过长,以避免降低感受态细胞的转化效率。
进行转化操作时,应根据相应温度及无菌条件的要求进行。
为防止转化实验不成功,可以保留部分连接反应液,以重新转化,将损失降到最低。
1. 取感受态细胞置于冰浴中,如需分装可将刚融化细胞悬液分装到无菌预冷的离心管中,置于冰浴中。 (一次转化感受态细胞的建议用量为 50-100μl,可以根据实际情况分装使用。应注意所用 DNA 体积 不要超过感受态细胞悬液体积的十分之一。以下实验以 100μl 感受态细胞为例。)
2. 向感受态细胞悬液中加入目的 DNA(100μl 的感受态细胞能够被 1ng 超螺旋质粒 DNA 所饱和),轻 轻旋转离心管以混匀内容物,在冰浴中静置 30 分钟。
3. 将离心管置于 42℃水浴中放置 90 秒,然后快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却 2 分钟,该过程不要摇 动离心管。(此步骤也可将离心管置于室温进行,时间不需十分准确,夏季或室温较高时,可放置 5-8 分钟左右;如果室温较低,可延长时间至 8-15 分钟左右。条件允许建议使用 42℃热激方法。)
4. 向每个离心管中加入 500μl 无菌的 SOC 或 LB 培养基(不含抗生素),混匀后置于 37℃ 150rpm,摇床 振荡培养 45 分钟,目的是使质粒上相关的抗性标记基因表达,使菌体复苏。 5. 无菌条件下,取适量菌液加到含相应抗生素的 LB 固体培养基平板上,用无菌的细菌涂布器或玻璃珠将 细胞均匀涂开。等平板中的液体完全吸收后,倒置平板,37℃培养 12-16 小时。(涂布用量可根据具 体实验来调整。转化质粒在 10ng 左右,90mm 平皿涂布 100µl,55mm 平皿涂布 50µl;连接产物的转 化菌液建议离心后倒掉大部分上清,余 200µl,取 100µl 用于涂布。) 6. 保留剩余的菌液于 4℃冰箱中,视平板上菌落生长情况决定去留。
NEB 10-beta 感受态细胞
相关试剂及培养基的制备方法:
1. LB 液体培养基:称取 10g,Tryptone,5gYeastExtract 和 10gNaCl 置于 1L 烧杯中。加入约 800ml 的去 离子水,完全溶解后用 2mol/L 的 NaOH 溶液调节 pH 值至 7.0。加去离子水定容至 1L。分装后,121℃ 高压灭菌 20 分钟。
2. SOB 和 SOC 培养基:称取 20gTryptone,5gYeastExtract,0.5gNaCl 置于 1L烧杯中加入约 800ml 的去 离子水,完全溶解后再补加 10ml250mMKCl 溶液,滴加 5MNaOH(约 0.2ml)调 pH 值 7.0。加入去 离子水将培养基定容至 1L。121℃灭菌 20 分钟。使用时加入 5ml 灭菌的 2MMgCl2 溶液(此种培养基 称为 SOB) 。再补加经 0.22um 过滤除菌的 1M 葡萄糖溶液 2ml(此种培养基为 SOC)。
3. 转化复苏细菌用的液体 LB 培养基或 SOC 培养基:可以一次高压 50ml 液体培养基,无菌状态按 1ml 每管分装于高压灭菌的 1.5ml 离心管中,装于自封袋中,冻存于-20℃中,每次用一支。可以极大地避免培养基污染和减少劳动量。
4. LB 固体选择培养基:100ml LB 液体培养基中加入 1.5g 琼脂粉,摇匀后,121℃高压灭菌 20 分钟。冷 却至 50℃左右时加入相应浓度的抗生素(如 AMP 浓度通常为 100ug/ml),混匀后倒在细菌用的无菌培养皿中,等琼脂凝固后即可使用。
5. IPTG:称量 1.9gIPTG(MW=238.31)充分溶解于 40ml 灭菌水,浓度为 200mmol/L。用无菌 0.22μm 过滤膜过滤除菌。小份分装后,-20℃保存。
6. X-gal:用 DMF(二甲基甲酰胺)配制成 20mg/ml,小份分装(1ml/份)后,-20℃避光保存。
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